LPMP
Laboratoire de Physiologie Moléculaire des Plantes
Laboratoire de référence en biotechnologie végétale, le LPMP développe des approches innovantes en physiologie moléculaire, omique et métagénomique pour répondre aux défis agricoles et environnementaux.
Nos Réalisations
Découvrez quelques chiffres clés qui témoignent de notre engagement
Intégration omique et approche métagénomique pour décrypter les mécanismes de la tolérance aux contraintes abiotiques chez les vignes sauvages
Objectif général
Décryptage des mécanismes de la tolérance aux contraintes abiotiques chez les vignes sauvages par l’intégration omique et l’approche métagénomique.
Objectifs spécifiques
1. Identification des protéines associées à la tolérance au stress salin chez la vigne sauvage et cultivée par une analyse protéomique comparative
2. Identification des métabolites clés impliqués dans la tolérance de la vigne sauvage à la contrainte hydrique (profilage de métabolites).
3. Intégration des données et identification des réseaux de régulation et marqueurs clés de la tolérance à la contrainte abiotique chez la vigne sauvage: étude des réseaux de régulation et échangeurs clés de la tolérance à la salinité, à la sécheresse et ceux communs aux deux contraintes.
4. Caractérisation des micro-organismes associés aux racines des vignes sauvages par l’approche métagénomique pour élucider leurs rôles dans la tolérance aux stress abiotiques par (i) identification des profils bactériens et fongiques associés aux racines de la vigne sauvage et (ii) caractérisation des réseaux de co-occurence et ce, afin d’utiliser le microbiote comme outil biotechnologique et durable dans les vignobles.
Approche multi-omique et analyse des qualités nutritionnelles et technologiques de l’orge cultivée en plein champ sous différents étages bioclimatiques: Identification des marqueurs de performance
Objectif général
Identification des marqueurs de potentialités et des réseaux moléculaires liés à la performance spécifique de l’orge locale dans différentes conditions bioclimatiques.
Objectifs spécifiques
1. Suivis physiologiques et agronomiques des accessions et des variétés dans les conditions bioclimatiques spécifiques des sites d’expérimentation: Identification des accessions d’orge manifestant une meilleure adaptation en termes de biomasse et de rendement.
2. Evaluation des profils phytochimiques, des caractéristiques technologiques, de la contamination par les toxines et de la résistance aux maladies fongiques majeures: Sélection des orges performantes en terme de qualité.
3. Identification des gènes candidats clés impliqués dans la performance à maturité par l’approche transcriptomique (RNASeq): Etablissement d’un modèle de réseaux de régulation impliquant les différents intervenants moléculaires.
4. Analyses comparatives des protéomes des accessions/variétés pour la sélection des marqueurs spécifiques associés à la performance des génotypes en termes de rendement et de qualité.
Stabilisation, caractérisation phytochimique et valorisation de coproduits agricoles (cas de la vigne)
Objectif général et objectifs spécifiques
1. Récupération et stabilisation de la biomasse végétale générée par les pratiques agricoles/industrielles en utilisant différentes techniques.
2. Caractérisation phytochimique et détermination du contenu métabolique et identification des conditions optimales de stabilisation pour chaque biomasse résiduelle.
3. Détermination des potentialités fertilisantes, fourragères, anti-fongiques et anti-bactériennes des matrices végétales stabilisées
4. Exploitation de la matrice végétale stabilisée et caractérisée pour l’alimentation animale et en agriculture, comme biofongicides et biofertilisants.
Adoption de plusieurs techniques de culture in vitro en vue d’améliorer, de valoriser et de conserver la biodiversité végétale
Objectif général et objectifs spécifiques
L’objectif général de ce projet est l’amélioration, la conservation et la valorisation de la biodiversité de différentes espèces pérennes dont la vigne et le figuier de barbarie et autres espèces spontanées (câprier, plantes à bulbes). Spécifiquement, le projet vise à assainir certaines espèces fruitières comme la vigne et l’olivier par embryogenèse somatique et culture de méristèmes, établir un programme de certification pour les clones indemnes de virus et de phytoplasmes, établir et maintenir du matériel callogène ainsi que des cultures cellulaires à long terme, identifier, caractériser et valoriser des substances bioactives issues des cultures cellulaires et embryogénes et propager et conserver des espèces rares ou en voie de disparition.
ORCID
Liste des publications dans des revues nationales / internationales
1-Bahlouli I., Samia Daldoul, Ameni Ben Zineb, Ahmed MLIKI, Francesco Mercati, Mahmoud Gargouri. 2025. Climbing with microbes: how elevation shapes the bacterial root microbiome of wild grapevine and selects plan growth-promoting hubs for sustainable viticulture. Science of the Total environment. 1000(2025)180412.
2-Ben Amar A., Dorsaf Allel, Amira Haouel, Samia Daldoul, Hatem Zaghden, Ahmed Mliki. 2025 “Overexpression of Grapevine Raffinose Synthase-Like Seed ImbibitionProtein VvRS/SIP Gene Confers Salt Tolerance in Transgenic Tomato. Journal of Plant Growth Regulation (2025) 44: 6597–6616. https://doi.org/10.1007/s00344-025-11846-w
3-Bouamama-Gzara B., Atrouss G., Gandoura S., Dabbebi A., Nafati H., Farah F., Zemni H., K. Ben Hamed. 2025. In vitro propagation, micromorphology and determination of nutrient content of two Tunisian halophytes (Salicornia fructicosa and Arthrocnemum machrostachyum). Plant Cell Tiss. Org. Cult., (PCTOC) 162:52.
4-Daldoul S, Khattab I M, Hanzouli F, Bahlouli I, Nick P, Mliki A, & Gargouri M (2025). Help from the past to cope with the future: Vitis sylvestris as a resource for abiotic stress resilience. Plants, People, Planet. https://doi.org/10.1002/ppp3.70034 (IF: 4.1, Q1).
5-Dammak I., Hamdi Z., Lamine M., Hajri H., Basiouni S., Ntougias S., Tsiamis G., Yilmaz M., Acheuk F., Emekci M., Eisenreich W., Huber C., Shehata A.A., Ben Salem A., Lasram S. (2025). Antifungal and anti-toxigenic activities of Origanum onites and Thymus capitatus essential oils and ethanolic extracts against mycotoxigenic fungi isolated from barley. Food Chemistry 493:145653. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2025.145653.
6-Djebbi I., Bouamama-Gzara B., Oueslati S., Ben Mansour R.,·C. Chaffai-Haouari. 2025. Natrum muriaticum enhances salt stress resilience in durum wheat (Triticum durum) via antioxidant defense and osmotic adjustment. Cereal Res Comm. https://doi.org/10.1007/s42976-025-00696-7
7-Fathalli N., Imene Rajhi, Rim Jouini, Ghassen Abid, Samiha Mejri, Abdelwahed Ghorbel, Robert K. Jansen, Rim Nefissi Ouertani. Effect of salt stress on K+/Na+ homeostasis, osmotic adjustment and expression profiles of high-affinity potassium transporter (HKT) genes. Protoplasma 2025, https://doi.org/10.1007/s00709-025-02070-0 (IF: 2,5 ; Q1).
8-Hanzouli F, Daldoul S, Zemni, H, Boubakri H, Vincenzi S, Mliki A, & Gargouri M (2025). Stilbene production as part of drought adaptation mechanisms in cultivated grapevine (Vitis vinifera L.) roots modulates antioxidant status. Plant Biology, 27(1), 102-115 (IF:3.6, Q1). doi: 10.1111/plb.13738.
9-Hidri R., Azri R., Burow K., Zorrig W., Debez A., Alyami N.M., Rabhi M., Bensalem-Fnayou A., Mliki A., Franken P., Aroca R. (2025). Significance of photosystem integrity and reducing Cd accumulation in mitigating Cd stress on olive tree inoculated with soil-borne bacteria consortium is variety-dependent. Plant Stress 15: 100788
10-Jardak R., Jawaher Riahi, Wassim Azri, Hatem Boubakri, · Sebastien Planchon, Samiha Mejri,·Hans-Peter Mock, Jenny Renaut, · Abdelwahed Ghorbel (2025) Comparative proteomic analysis of Tunisian barley landraces in response to salinity at the tillering stage. Protoplasma 263(1):67-88. doi: 10.1007/s00709-025-02085-7.
11-Jouini R., Imen Rajhi, Ghassen Abid, Samiha Mejri, Fatma Souissi, Abdelwahed Ghorbel, Rim Nefissi Ouertani. Comparative Analysis of Salt Stress Responses in Two Barley Genotypes: Role of Ionic and Oxidative Stress Components. Journal of Plant Growth Regulation 2025, https://doi.org/10.1007/s00344-025-11947-6 (IF: 4,1).
12-Khiari, R., Ounaissi, D., Lançon-Verdier, V. Zemni H., Mihoubi D. Maury C. (2025). Ability of hyperspectral imaging to assess physicochemical and phytochemical quality parameters of raisins. Food Measure 19, 1234–1247 (2025). https://doi.org/10.1007/s11694-024-03036-1
13-Zemni H., Lamine M., Attia J., Mankaï M., Khiari R., Jallouli S., A. Bensalem-Fnayou. (2025). Chemometrics-based aroma profiling reveals changes in Citrus limon L. Peels during drying: Advances in monitoring lemon essence. Flavour and Fragrance Journal. http://doi.og/10.1002/ffj.3855
14-Abid G., Khaled Sassi, Frédéric Debode, Benjamin Dubois, Rim Nefissi Ouertani, Souhir Abdelkrim, Emna Ghouili, Ying Gao, Zhengguo Li, Salwa Harzalli Jebara, Moez Jebara, Yordan Muhovski. Comprehensive physiological and transcriptomic insights into drought stress responses in faba bean (Vicia Faba L.). BMC Plant Biology 2025, https://doi.org/10.1186/s12870-025-07670-9 (IF: 4,8).
15-Abid G., Rahma Abdelkader, Mahmoud M’hamdi, Rim Nefissi Ouertani, Yordan Muhovski, Emna Ghouili, Souhir Abdelkrim, Ying Gao, Zhengguo Li, Fatma Souissi, Salwa Harzalli Jebara, Moez Jebara. Enhancing drought tolerance in faba bean (Vicia faba L.) by optimizing gamma-aminobutyric acid (GABA) supplementation: physiological, biochemical and molecular insights. Protoplasma, https://doi.org/10.1007/s00709-025-02126-1 (IF: 2,5).
16-Ghouili E., Yordan Muhovski, Richard Hogue, Rim Nefissi Ouertani, Souhir Abdelkrim, Zhengguo Li, Fatma Souissi, Salwa Harzalli Jebara, Moez Jebara. Effects of compost and biochar on barley’s growth and response to drought stress: insights into osmoprotectants, antioxidant activity, and gene expression. Journal of Soil Science and Plant Nutrition 2025, https://doi.org/10.1007/s42729-025-02766-5 (IF: 3,1).
Technologies et Plateformes
Equipements Scientifiques
Collaborons pour Innover
Nos partenaires
